注 意 ： 正式測定前務必取2-3個預期差異較大的樣本做預測定
測定意義：
ProDH是存在于線粒體內(nèi)的催化脯氨酸降解的關鍵酶。脯氨酸是分布最廣泛的一種滲透物質，在脅迫條件下很多植物可以通過增加合成、減少降解而在體內(nèi)累積大量脯氨酸，降低ProDH活性對于調節(jié)滲透平衡、防止?jié)B透脅迫對植物造成傷害、清除自由基、保護細胞結構具有重要意義。
測定原理：
利用異硫氰酸甲酯檢測ProDH催化的脫氫反應，600nm處吸光值的吸光值的變化反映酶活性的高低。
需自備的儀器和用品：
可見分光光度計、臺式離心機、可調式移液器、1mL玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。
試劑的組成和配制：
提取液：60mL×1瓶，4℃保存；
試劑一：液體2 mL×1支， 4℃保存；
試劑二：液體50 mL×1瓶， 4℃保存；
試劑三：粉劑×1瓶， 4℃保存；臨用前加入8mL蒸餾水充分溶解待用，用不完的試劑4℃保存；
試劑四：粉劑×1瓶， 4℃保存；臨用前加入8mL蒸餾水充分溶解待用，用不完的試劑4℃保存；
試劑五：粉劑×5支，4℃保存；
粗酶液提取：
按照組織質量（g）：提取液體積(mL)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g樣本，加入1mL提取液），進行冰浴勻漿，1500g 4℃離心15min，取上清液于一支新的EP管中，加入一滴試劑一（用10μL的槍頭加入），渦旋混勻，冰浴放置30min后，16000g 4℃離心20min，取上清置冰上待測。
測定步驟：
1、 分光光度計或酶標儀預熱30min以上，調節(jié)波長至600nm，蒸餾水調零。
2、 樣本測定
（1）混合液的配制：首先將試劑三和試劑四配成溶液（見試劑的組成和配制），臨用前根據(jù)用量按照試劑二（V）：試劑三（V）：試劑四（V）=7.2（mL）：0.9（mL）：0.9（mL）的比例充分混勻。（注意：現(xiàn)配現(xiàn)用，用多少配多少），置于30℃水浴5min；
（2）試劑五的配制：取試劑五一支，臨用前加入1mL蒸餾水充分溶解待用，現(xiàn)配現(xiàn)用。
（3）1mL玻璃比色皿中加入175μL樣本、75μL試劑五和750μL混合液，混勻，立即記錄600nm處初始吸光值A1和10min后的吸光值A2，計算ΔA=A2-A1。
ProDH活性計算：
（1）按樣本蛋白濃度計算：
單位定義：每分鐘每mg組織蛋白在每mL反應體系中使600nm處吸光值變化0.01為一個
酶活力單位。
ProDH（U/mg prot）=ΔA×V反總÷（V樣×Cpr）÷0.01÷T =57.14×ΔA÷Cpr
（2）按樣本鮮重計算：
單位定義：每分鐘每g組織在每mL反應體系中使600nm處吸光值變化0.01為一個
酶活力單位。
ProDH（U/g 鮮重）=ΔA×V反總÷(W× V樣÷V樣總)÷0.01÷T =57.14×ΔA÷W
V反總：反應體系總體積，1mL； V樣：加入樣本體積，0.175mL；V樣總：加入提取液體積，1 mL；T：反應時間，10 min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量，g。
